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溶血空斑形成試驗

更新時間:2016-01-04 點擊量:1204

    溶血空斑形成試驗(plaque forming cell assay)是體外檢測和計數(shù)B細胞功能的一種常用方法,即檢測空斑形成細胞(plaque-formiilg cell,PFC),反映B細胞產(chǎn)生抗體的功能。當B細胞受抗原或有絲分裂原刺激后,可分化增殖為漿細胞,并分泌抗體。B細胞功能減弱或缺陷,可表現(xiàn)為抗體形成細胞減少及血清Ig量的減少。PFC檢測方法很多,有瓊脂固相法、蓋玻片法、小室液相法、單層細胞法等。

.20%SRBC懸液(用Hank’s液配制)。

2.補體取3只豚鼠的新鮮血清混合,取壓積SRBC,按SRBC與豚鼠血清:4~:6的比例加入壓積SRBC,混勻,置4℃冰箱30min,2000r/min離心20min去除SRBC,以吸收豚鼠血清中可能存在的抗SRBC抗體,防止假空斑的出現(xiàn)。

3.底層和頂層瓊脂取抗補體作用小的瓊脂,用PBS配成.4%和O.7%兩種濃度。

4.DEAE右旋糖酐分子量50萬,用蒸餾水配成%濃度備用。

(三)方法

免疫脾細胞懸液的制備

.免疫小鼠:每只小鼠經(jīng)尾靜脈或腹腔注入上述SRB(:懸液ml。

2.制備脾細胞懸液:將免疫后第四天的小鼠.拉頸處死,解剖取出脾臟,放人含Ca 2+ 、Mg 2+冷的pH值7.2 PBS中漂洗后,去掉結締組織,加入適量的PBS,用彎頭鑷子擠壓出脾細胞,稍靜置,吸上清液至離心管中,500r/min離心5min,棄上清液后,定量加入PBS,混勻,按白細胞計數(shù)法計算脾細胞,zui后用PBS調整細胞數(shù)至07/ml的濃度。一般每只脾臟細胞數(shù)為~.5×08個。

3.傾注底層瓊脂將.4%瓊脂凝膠經(jīng)加熱融化后,傾注于水平位置的平皿內,每皿2~3ml,凝固后,置37℃溫箱,平皿反扣,開蓋lh后備用。

4.頂層瓊脂的制備將0.7%的瓊脂融化后,置于45℃恒溫水浴箱中,依次加入:①2×09/ml SRBC懸液O. ml;②%DEAE有旋糖酐0.05ml;③07/ml脾細胞懸液O. ml。迅速混勻后,傾注于已鋪好底層瓊脂的平皿內,使之均勻鋪開,凝固后,靜置約5min,放37℃溫育~.5h。

5.加補體從溫箱中取出平皿,每皿加入:30稀釋的新鮮豚鼠血清.5ml(如未加DE—AE右旋糖酐,則加原血清或:5稀釋的新鮮血清.5ml),繼續(xù)放37℃溫箱中溫育30min后,取出,觀察溶血空斑。也可在室溫下放置lh,4℃冰箱過夜,翌日觀察結果。

(四)結果分析

    肉眼觀察可見空斑為邊緣整齊的圓形透明區(qū),如肉眼難以分辨,可在低倍鏡下鑒定,空斑的有淋巴細胞,周圍為透明區(qū)。一個空斑代表一個PFC,計數(shù)每塊玻片的空斑數(shù),算出每個脾臟中PFC數(shù)。

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