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產(chǎn)品名稱 | 人腎實質(zhì)細胞 | 組織來源 | 腎組織 |
規(guī)格 | 5×10?Cells/T25培養(yǎng)瓶 | 包裝 | T25培養(yǎng)瓶 |
貨號 | GOY-01X0929 | 細胞形態(tài) | 成纖維細胞樣 |

人腎實質(zhì)分離自腎組織;腎臟是機體的重要器官,它的基本功能是生成尿液,借以清除體內(nèi)代謝產(chǎn)物及某些廢物、毒物,同時經(jīng)重吸收功能保留水份及其他有用物質(zhì),如葡萄糖、蛋白質(zhì)、氨基酸、鈉離子、鉀離子、碳suan氫鈉等,以調(diào)節(jié)水、電解質(zhì)平衡及維護酸堿平衡。腎臟同時還有內(nèi)分泌功能,生成腎素、促紅細胞生成素、活性維生D3、前列腺素、激肽等,又為機體部分內(nèi)分泌激素的降解場所和腎外激素的靶器官。腎臟的這些功能,保證了機體內(nèi)環(huán)境的穩(wěn)定,使新陳代謝得以正常進行。腎臟移植是臨床上治療慢性腎功能衰竭的有效方法,然而這種方法受到供體腎短缺的限制。腎細胞移植可部分解決供體腎短缺的問題,是未來可以替代腎臟移植的有效方法。因此,體外腎細胞的培養(yǎng)受到國內(nèi)外有關(guān)專家的密切關(guān)注。原代腎細胞作為一種常用的腎臟毒理學研究對象,其分離方法主要有機械研磨分離法和酶消化法,酶消化法因?qū)毎麚p傷小、分離效果好而優(yōu)于機械研磨分離法;目前常用的酶消化法主要是yi蛋白酶消化法和膠原酶消化法。
方法簡介:
公司實驗室分離的人腎實質(zhì)采用膠原酶-yi蛋白酶混合消化法結(jié)合差速貼壁法制備而來,細胞總量約為5×10?cells/瓶。
質(zhì)量檢測:
公司實驗室分離的人腎實質(zhì)經(jīng)檢測,純度可達90%以上,且不含有HIV-1、HBV、HCV、支原體、細菌、酵母和真菌等。

本公司所有產(chǎn)品僅供科學實驗,不做其他科學實驗外的使用!
包被條件 鼠尾膠原Ⅰ(2-5μg/cm2)
培養(yǎng)基 含FBS、生長添加劑、Penicillin、Streptomycin等
換液頻率 每2-3天換液一次
生長特性 貼壁
細胞形態(tài) 成纖維細胞樣
傳代特性 可傳3代左右
消化液 0.25%yi蛋白酶
培養(yǎng)條件 氣相:空氣,95%;CO2,5%
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準備工作
1. 實驗器材準備:準備無菌的培養(yǎng)皿、培養(yǎng)瓶、移液管、離心管、手術(shù)器械等,并進行高壓滅菌或其他合適的消毒處理。
2. 試劑準備:配制或購買合適的培養(yǎng)基、消化酶(如、膠原酶等)、胎牛血清、雙抗等試劑,確保其無菌且在有效期內(nèi)。
3. 實驗動物或組織來源準備:根據(jù)實驗需求,選擇合適的動物并進行相應(yīng)的麻醉或處死,獲取所需組織;或從已有的組織樣本庫中獲取組織。
取材與處理
1. 取材:在無菌條件下,迅速取出目標組織,盡量減少對組織的損傷,并去除多余的脂肪、結(jié)締組織等非目的組織。
2. 清洗:將取出的組織用預(yù)冷的無菌PBS沖洗數(shù)次,以去除血液和雜質(zhì)。
3. 剪切:將組織剪成約1 - 2mm3的小塊,以便后續(xù)消化。
細胞分離
1. 消化:將剪碎的組織塊放入含有適量消化酶的離心管中,在37℃恒溫搖床或培養(yǎng)箱中消化一段時間。期間可輕輕搖晃離心管,使消化更均勻。
2. 終止消化:當組織塊大部分被消化成單細胞懸液或小細胞團時,加入含血清的培養(yǎng)基終止消化。
3. 過濾與離心:用細胞篩過濾細胞懸液,去除未消化的組織碎片,然后將濾液以適當?shù)霓D(zhuǎn)速離心,收集細胞沉淀。
細胞觀察與檢測
1. 日常觀察:每天用倒置顯微鏡觀察細胞的形態(tài)、生長狀態(tài)、密度等,記錄細胞的變化情況,如發(fā)現(xiàn)細胞污染或異常,及時采取相應(yīng)措施。
2. 細胞計數(shù)與活力檢測:在需要時,可采用臺盼藍染色等方法對細胞進行計數(shù)和活力檢測,以了解細胞的生長情況和健康狀態(tài)。


一、取材與分離
1. 快速操作
- 組織取材后需立即處理,避免長時間暴露于室溫或非營養(yǎng)環(huán)境。
- 使用無菌 PBS 或生理鹽水沖洗組織,去除血液、雜質(zhì)。
2. 消化酶選擇
- 根據(jù)組織類型選擇消化酶,避免過度消化導(dǎo)致細胞損傷。
- 消化時間需嚴格控制(通常 10-30 分鐘),可通過顯微鏡觀察細胞解離狀態(tài)。
二、培養(yǎng)條件優(yōu)化
1. 培養(yǎng)基選擇
- 使用含血清或特定生長因子的培養(yǎng)基(如 DMEM、RPMI 1640 等),部分細胞需添加胰島素、EGF 等。
- 避免頻繁更換培養(yǎng)基品牌或批次,減少細胞適應(yīng)壓力。
2. 貼壁與傳代
- 原代細胞貼壁能力較弱,可能需要包被培養(yǎng)皿(如膠原蛋白、多聚賴氨酸)。
- 傳代時密度建議控制在 70%-80%,過度匯合會導(dǎo)致接觸抑制和分化。
三、污染控制
1. 無菌操作
- 全程在超凈臺操作,使用一次性耗材,避免交叉污染。
- 培養(yǎng)基中可添加雙抗,但長期使用可能影響細胞活性。
2. 支原體檢測
- 定期檢測支原體污染(如 PCR 法),污染后需及時丟棄細胞。
四、狀態(tài)監(jiān)控
1. 日常觀察
- 每天檢查細胞形態(tài)、密度及培養(yǎng)基顏色,及時更換培養(yǎng)基(通常每 2-3 天換液一次)。
- 異常形態(tài)(如細胞變圓、碎片增多)可能提示污染或營養(yǎng)不足。
2. 傳代與凍存
- 原代細胞分裂次數(shù)有限(一般 5-10 代),需及時凍存早期代次細胞。
- 凍存液建議使用 DMSO+血清(或?qū)S脙龃媾囵B(yǎng)基),梯度降溫后液氮保存。

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企業(yè)信息
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